質粒的制備
一、目的
掌握質粒的常用提取方法及其定量測定。
二、原理
質粒(Plasmid)是游離于細胞染色體之外的具有自行復制子的雙鏈閉環的DNA分子,其大小范圍從1kb至200kb以上不等。質粒分子本身含有復制功能的遺傳結構,能在宿主細胞獨立自主地進行復制,并在細胞分裂時保持恆定地傳給子代細胞。質粒帶有某些遺傳信息,所以會賦予宿主細胞一些遺傳性狀,根據質粒賦予細胞的表型可識別質粒的存在,是篩選轉化子細胞的根據。質粒的質粒分為兩類:原核細胞表達質粒和真核細胞表達質粒。
分子生物學實驗中用于重組DNA技術的質粒常常為經過改造的細菌質粒,它通常具有以下特征:①多克隆位點(MCS):為一些限制性內切酶的單一識別位點,可將外源DNA在這些位點上插入構成重組體,而不破壞質粒的生存能力及特性;②選擇標志:常為抗藥性基因,如抗卡那霉素基因(Ken+)。這是一種顯性基因,其產物是一種酶,能夠分解相應的藥物(如卡那霉素)。因此,被這種質粒轉化的細菌便能夠在含有相應藥物的培養基中繁殖,據此可判斷細菌轉化實驗是否成功;③復制子(Promoter):是一段具有特殊結構的DNA序列,能啟動DNA分子的自行復制,此外還帶有一些編碼質粒復制過程中必須的RNA和蛋白質的基因。
質粒提取的方法有多種:堿裂解法、煮沸裂解法、SDS裂解法等。本實驗采用堿裂解法,即在堿及SDS作用下菌體破碎,質粒釋出,而細菌染色體仍附在細胞膜上,可通過離心除去。
三、試劑
2M Glucose 0.25ml
1M Tris-HCl (pH 8.0) 0.25ml
0.1M EDTA (pH 8.0) 1.00ml
滅菌水 8.50ml,
臨用現配。
2. 0.2N NaOH/1%SDS:
滅菌水 7.00ml
1N NaOH 2.00ml
10% SDS 1.00ml
3. 氯仿(Chloroform)(AR)
4. 異丙醇(Isopropanol)(AR)
5. 70%冰乙醇(Ethanol)(AR)
6. 4M NaCl:116.9gNaCl溶于300ml蒸餾水中,再加蒸餾水至500ml。室溫保存。
7. 13%PEG8000:13g PEG8000溶于60ml蒸餾水中,再加蒸餾水至100ml,然后用0.22 μm濾器除菌過濾,4 oC保存。
8. 3M KAc(pH4.8):29.4g KAc,加少量蒸餾水溶解,用乙酸將pH調至4.8(約50ml),再加蒸餾水至100ml,室溫保存。
9.去離子水
10.10mg/ml Rnase A:100mg DNase-free Rnase A加10ml TE緩沖液,加熱100 oC 10min以滅活DNase,然后逐漸冷卻。-20 oC保存。
11.1M Tris-HCl(pH8.0):蒸餾水600ml;Tris 60.6g;HCl 15ml;用HCl將pH調至8.0,再加蒸餾水至500ml。
12.2M Tris-HCl(pH7.4):蒸餾水300ml;Tris 121.2g;HCl 35ml;用HCl將pH調至7.4,再加蒸餾水至500ml。
13.2M 葡萄糖:36g葡萄糖,溶于60ml蒸餾水中,再加蒸餾水至100ml,然后用0.22 μm濾器除菌過濾,-20 oC保存。
14.0.1M EDTA: 18.7g EDTA-Na2-2H2O,溶于300ml蒸餾水中,加入1 N NaOH約40ml,繼續將pH調至8.0,加蒸餾水至500ml, 室溫保存。
15.1N NaOH:40g NaOH,溶于60ml蒸餾水中,再加蒸餾水至1000ml,室溫保存。
16.10%SDS:10g SDS,溶于60ml蒸餾水中,再加蒸餾水至100ml,室溫保存。
17.TE緩沖液:10mM Tris(pH7.4)0.5ml;0. 1Mm EDTA(pH8.0)0.1ml;加蒸餾水至10ml。
18.50mg/ml卡那霉素
四、實驗儀器
1. 37℃水浴箱 (北京市醫療設備廠 型號:BS2型)
2. 高速離心機 (珠海黑馬醫學儀器有限公司 型號:TGL-16H型)
3. 紫外分光光度計 (上海第三分析儀器廠 型號:UV-754型)
4. 4℃低溫離心機 (珠海黑馬醫學儀器有限公司 型號:TGL-18R型)
5. 離心管(1.5ml和0.5ml)
6. 微量加樣器吸頭
7. 微量加樣器(1—10μl,1—100μl,200μl,1000μl)
8. 冰盒
五、實驗步驟
1.將含pBKcmv-hMLCK1的XL1-blue大腸桿菌接種到含有卡那霉素的固體培養基上(每毫升培養基加1μl 50mg/ml卡那霉素),37 oC孵育24h;
2.用滅菌牙簽挑選一單個菌落接種到3.0mlLB培養基中(含3μl卡那霉素),37 oC振蕩培養過夜;
3.3000rpm離心10min;輕輕傾去上清液,離心管倒置濾紙上片刻;
4.將沉淀重懸于200μl GTE緩沖液中,轉移至1.5ml 離心管中;
5.加300μl NaOH/SDS液,顛倒混勻,置冰上5min;
6.加300μl 3M KAc(pH4.8),混勻,置冰上5min;
7.14000rpm,離心10min,將上清液移入另一1.5ml離心管中;
8.上清液中加1.6μl 10mg/ml Rnase A,37 oC孵育20min;
9.加氯仿400μl,混勻30sec,14000rpm離心1min,取上清液0.7ml置另一1.5ml離心管中,再用400μl氯仿提取一次;
10.取上清液0.6ml加入等體積異丙醇,混勻,14000rpm離心10min,傾去上清液,離心管倒置濾紙上片刻;
11.沿管壁慢慢加入0.5ml預冷70%乙醇,洗滌沉淀,14000rpm離心5min,傾去上清液,離心管倒置濾紙上片刻,真空干燥5min或室溫干燥;
12.用32μl滅菌水溶解沉淀物,加8μl 4M NaCl和40μl 13%PEG8000,混勻,置冰上20min;
13.14000rpm,4 oC離心15min,棄去上清液;
14.沿管壁慢慢加入0.5ml預冷70%乙醇,洗滌沉淀,14000rpm離心5min,傾去上清液,離心管倒置濾紙上片刻,真空干燥5min或室溫干燥;
15.用20μl滅菌水溶解DNA;
16.取5μl DNA溶液用495μl滅菌水稀釋,用UV分光光度計比色,讀取A260和A280吸光度值,計算出A260 /A280 比值及質粒DNA濃度。
六、結果
1. 按下列公式計算DNA濃度:
質粒DNA濃度(μg/μl)= A260×稀釋度/20= A260×5
2.質粒DNA的純度和含量測定結果:
A260=
A280=
A260/A280=
質粒DNA含量= μg/μl;
3.若A260 /A280比值在⒈8---⒉0之間,說明質粒DNA純度高,
若A260 /A280<⒈8,則說明提取的質粒DNA中,還有蛋白質沒有除去;
若A260 /A280>⒉0,則說明提取的質粒DNA中,還有RNA沒有除去。
七﹑注意事項
1.NaOH/SDS液需現用現配,且這一步反應需要充分混勻,使細胞裂解。
2.整個過程動作輕柔,防止提取的DNA鏈斷開。
⒈ GTE緩沖液:
3.堿裂解第11、14步離心后要緩慢倒上清液,防止將管底的DNA沉淀一起倒出。
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